| 首页 > 杂志列表 > 河北中医 > 2007年 > 1月 > 冬虫夏草诱导乳癌细胞MCF-7凋亡的实验研究 | ||
| 作者:刘东颖 | ||
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【摘 要】 目的 探讨中药冬虫夏草(cordyceps sinensis,CS)对人乳癌细胞株MCF-7体外增殖抑制作用及凋亡的影响。 方法 应用MTT比色法测定CS对MCF-7的增殖抑制率;应用流式细胞仪、DNA琼脂糖凝胶电泳法观察细胞凋亡。 结果 CS能抑制MCF-7细胞生长,且呈浓度.时间依赖性,CS在1.0~50μg.mL培养24~96h生长抑制率改变最为明显;CS可使MCF-7细胞凋亡,流式细胞仪DNA直方图上出现了凋亡峰,凋亡率分别为(4.9±3.2)%、(10.7±2.7)%、(14.7±0.5)%,对照组凋亡率为(0.9±0.2)%,凋亡率呈浓度依赖性;琼脂糖凝胶电泳可见DNA梯形条带。 结论 CS可诱导MCF-7细胞凋亡,对MCF-7细胞具有增殖抑制作用。 LIUDongying. Department ofWestern Medicine combined withTraditional ChineseMedicine,Tianjin Cancer Hospital Affiliated to Tianjin Medical University,Tianjin300060 1 材料与方法 1.2 药物制备 冬虫夏草发酵液的浓缩液为棕黄色黏稠液体,溶解于RPMI1640培养液20mL中,配制成终浓度为20mg.mL试验用液,用0.22μm滤器过滤除菌,置无菌瓶中,4℃冰箱保存备用。 1.3 细胞培养 人乳癌细胞株MCF-7置于含10%胎牛血清、100IU.mL青霉素和100μg.mL链霉素的RPMI1640培养液,37℃,5%CO2 培养箱中培养。 1.4 MTT比色法检测药物对MCF-7细胞的增殖抑制作用 取对数生长期的细胞进行常规消化,调整细胞浓度至3×104 .mL,100μL.孔接种到96孔板。培养24h后实验组加入CS,浓度分别为:0.1、1.0、10、20、50、100μg.mL,每个浓度设4个平行孔,100μL.孔。对照组加入培养液,100μL.孔,设8个平行孔,分别继续培养24、48、72、96、120h。2组均加入以无血清RPMI1640培养基溶解的MTT(5mg.mL),20μL.孔,继续孵育4h后弃去上清,加二甲基亚砜(DMSO)150μL.孔,室温摇动30min。酶标仪测定570nm处的吸光度(A)值并记录结果。按以下公式计算抑制率:活性抑制率=(对照组A值-实验组A值).对照组A值×100%。 1.5 流式细胞仪分析细胞周期和凋亡细胞百分率(凋亡率) 取对数生长期细胞,常规消化,调整细胞浓度至5×105 .mL,接种到培养瓶中,4mL.瓶,24h后加药。实验组:10、20、50μg.mL,4mL.瓶;对照组加入培养液4mL.瓶。培养48h,常规消化、离心,收集药物作用后的细胞。2组均用磷酸盐(PBS)缓冲液洗2次,200μL PBS重悬,滴加在4℃预冷的95%乙醇中,4℃冰箱固定过夜(18h以上)。重新震荡摇匀后,离心弃掉乙醇,PBS缓冲液洗1次,加入500μL碘化丙啶(PI)(50μg.mL),4℃避光染色30min,用200目尼龙网过滤移至流式管中,上机检测。 1.6 凋亡细胞的DNA琼脂糖凝胶电泳 收集20、50μg.mL CS作用48h后的细胞和对照组细胞,用E.Z.N.A.Blood DNA Kits(D3492-01)提取细胞DNA。紫外分光光度计测定DNA含量及纯度。DNA琼脂糖凝胶电泳:电泳缓冲液为0.5×TBE,DNA上样量:8μg.lane,以200bp marker作为对照组,75V、90min。紫外检测仪观察并电泳凝胶摄影分析。 1.7 统计学方法 实验数据采用SPSS12.0统计软件进行统计分析。 2 结 果 2.2 流式细胞仪分析CS诱导细胞引流凋亡的作用 10、20、50μg.mL CS处理细胞后可见明显凋亡峰,其凋亡率分别为(4.9±3.2)%、(10.7±2.7)%、(14.7±0.5)%。对照组凋亡率为(0.9±0.2)%。其中20、50μg.mL CS处理细胞的凋亡率明显高于对照组(P<0.05)。 3 讨 论 本实验首先观察了CS对MCF-7细胞的增殖抑制作用,结果发现CS在较低的作用浓度(1.0μg.mL)就可以有效抑制MCF-7细胞的增殖,且在1.0~50μg.mL浓度范围内对MCF-7细胞的增殖抑制作用呈现浓度和时间依赖性,随着药物浓度和作用时间的增加,CS的抑制作用增强。流式细胞仪分析结果也显示,CS诱导MCF-7细胞凋亡,其凋亡率在一定范围内也具有随CS浓度增高而增高的趋势。10、20、50μg.mL CS处理MCF-7细胞后,凋亡率分别为(4.9±3.2)%、(10.7±2.7)%、(14.7±0.5)%。提取CS处理组细胞的DNA,进行琼脂糖凝胶电泳,可呈现明显的DNA梯形条带,对照组则未出现梯形条带。这个结果与流式细胞仪的结果一致。本实验研究表明,CS通过某些尚不清楚的机制可诱导MCF-7细胞凋亡,这为今后在CS传统扶正培本治疗乳腺癌基础上,赋予其新的含义提供了一定的实验依据。 近年来,许多学者从分子水平对中药诱导肿瘤细胞凋亡的机制进行了研究,但结果还不是很多,仅限于几个重要的基因,Bcl-2、C-myc、p53是几个了解较为深入的与凋亡调控有关的基因。现已证实,Bcl-2是最重要的抑制肿瘤细胞凋亡的基因[4~9] ,CS是否是通过这一机制诱导MCF-7细胞凋亡,值得进一步深入研究。 [2] 刘洁,陈正,杨旭,等.蚕蛹虫草抗肿瘤作用的研究[J].白求恩医科大学学报,1992,18(5):423-425 [3] 刘凤安,郑效.冬虫夏草抗喉癌的研究[J].白求恩医科大学学报,1993,19(1):57-58 [4] 卢步峰,杨佩满,朱正美.Bcl-2在细胞凋亡调控和肿瘤耐药形成中的作用及其分子机制[J].解剖科学进展,1998,4(1):54-59 [5] Merlino G Regulatory imbalances in cell proliferation and cell death during oncogenesis in transgenic mice[J].Semin Cancer Biol1994,5(1):13-16 [6] Reed JC Bcl-2and the regulation of programmed cell death[J].JCell Biol1994,124(1,2):1-3 [7] 郑军.Bcl-2及Bax基因对肿瘤细胞凋亡的调控[J].重庆医科大学学报,1999,24(1):107-109 [8] Sato T,Hanada M,Bodrug S,et al.Interactions among members of the Bcl-2protein family analyzed with a-yeast two hybrid sys-tem[J].Proc Natl Acad Sci USA1994,91(20):9238-9340 [9] Murphy KL,Kittrell FS,Gay JP,etc.Bcl-2expression delays mammary tumor development in dimethylbenz(a)anthracene-treated transgenic mice[J].Oncogene1999,18(47):6597-6580 作者简介:刘东颖(1974-),女,主治医师,硕士。从事肿瘤的中西医结合治疗和姑息治疗工作。 |
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